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Publié par | profil-zyak-2012 |
Publié le | 01 novembre 2005 |
Nombre de lectures | 60 |
Langue | Français |
Poids de l'ouvrage | 52 Mo |
Extrait
UNIVERSITÉ LOUIS PASTEUR
STRASBOURG I
ÉCOLE DOCTORALE DES SCIENCES DE LA VIE ET DE LA SANTÉ
THÈSE
présentée
pour l’obtention du grade de
DOCTEUR DE L’UNIVERSITÉ LOUIS PASTEUR
Discipline : Sciences du vivant
Domaine : Aspects Moléculaires et Cellulaires de la Biologie
par
Sophie JAEGER
Étude de la maturation de l’extrémité 3’ non
traduite et de la traduction de l’ARN messager
codant pour l’histone H4
Soutenue le 25 Novembre 2005 devant la commission d’examen :
M. Gilbert ERIANI Directeur de Thèse
M. Eric WESTHOF Rapporteur interne
Mme Christiane BRANLANT Rapporteur externeAnnie CAHOUR
M Richard GIEGE ExaminateurAbréviations.......................................................................................................................... 7
INTRODUCTION................................................................................................................. 9
1 Les histones, des composantes essentielles du nucléosome ......................................... 11
2 Fonctions du nucléosome............................................................................................ 15
2.1 Compaction de l’ADN ............................................................................................................. 15
2.2 Régulation de l’expression du génome, information épigénétique.................................... 15
2.2.1 Ajout de modifications post-traductionnelles sur les histones............................................................16
2.2.1.1 Les différents types de modification des histones.....................................................................17
2.2.1.2 Régulation de l’ajout et du retrait des modifications touchant les histones .............................18
2.2.2 Modifications de la structure et composition du nucléosome.............................................................18
2.2.2.1 Remodelage de la structure du nucléosome dépendant de l’ATP ............................................18
2.2.2.2 Incorporation de variants d’histones..........................................................................................20
2.2.2.2.1 Caractéristiques des variants d’histones...............................................................................20
2.2.2.2.2 Fonctions des variants d’histones, quelques exemples........................................................21
2.2.2.2.3 Régulation de l’expression des variants d’histones .............................................................26
2.2.2.2.4 Incorporation des variants dans les nucléosomes ................................................................26
2.3 Transmission et modulation de l’information épigénétique............................................... 27
2.3.1 Le code histone.....................................................................................................................................27
2.3.2 Héritage de l’information épigénétique ...............................................................................................27
2.3.3 Dynamique de la chromatine ...............................................................................................................28
3 Synthèse des histones majeures et régulation de leur expression................................ 29
3.1 Nécessité d’une régulation de la production des histones................................................... 29
3.2 Régulation de la synthèse d’histones dans la levure et les plantes..................................... 31
3.3 Expression et régulation des gènes réplication-dépendants chez les métazoaires........... 33
3.3.1 Transcription.........................................................................................................................................34
3.3.2 Maturation de l’extrémité 3’ ................................................................................................................37
3.3.2.1 Les différents acteurs de la réaction de maturation...................................................................38
3.3.2.1.1 La snRNP U7.........................................................................................................................38
3.3.2.1.2 La protéine ZFP100...............................................................................................................41
3.3.2.1.3 Le complexe HBP:tige-boucle sur les ARN pré-messagers d’histones..............................41
3.3.2.1.3.1 Les partenaires ..............................................................................................................41
3.3.2.1.3.2 Rôle du complexe HBP:tige-boucle dans la maturation en 3’ ....................................44
3.3.2.1.4 Le site de coupure .................................................................................................................48
3.3.2.2 Lsm11 est-elle responsable de la coupure ? ..............................................................................49
3.3.3 Export de l’ARNm mature du noyau vers le cytoplasme ...................................................................49
13.3.4 Traduction.............................................................................................................................................51
3.3.4.1 Rôle de la protéine HBP dans la traduction...............................................................................51
3.3.4.2 Des études très controversées.....................................................................................................54
3.3.5 Stabilité des ARNm d’histones............................................................................................................55
4 Article 1....................................................................................................................... 57
AVANT-PROPOS DE LA THÈSE ..................................................................................... 67
CHAPITRE 1...................................................................................................................... 71
1 Introduction ................................................................................................................ 73
2 La méthode du triple hybride ...................................................................................... 74
3 Résultats...................................................................................................................... 75
4 Discussion ................................................................................................................... 76
5 Article 2....................................................................................................................... 78
6 Article 3....................................................................................................................... 86
CHAPITRE 2...................................................................................................................... 95
1 Introduction ................................................................................................................ 97
2 Résultats...................................................................................................................... 98
3 Discussion ................................................................................................................. 105
4 Article 4..................................................................................................................... 107
CHAPITRE 3.................................................................................................................... 129
1 Introduction .............................................................................................................. 131
2 Résultats.................................................................................................................... 133
2.1 L’ARNm de l’histone H4 présente un mécanisme de traduction original...................... 133
2.2 Étude de la structure secondaire de l’ARNm de l’histone H4 ......................................... 135
2.3 Identification des éléments structuraux de l’ARNm impliqués dans la traduction ...... 138
2.4 Sondage de l’ARNm en présence de petits ARNs anti-sens.............................................. 139
2.5 Identification de nucléotides impliqués dans la traduction par mutagenèse dirigée .... 140
2.6 Sondage de la structure des ARNm mutés ......................................................................... 141
2.7 Recrutement du ribosome..................................................................................................... 141
22.8 Recrutement de deux ribosomes, cartographie du deuxième site de recrutement........ 142
3 Discussion ................................................................................................................. 144
4 Article 5..................................................................................................................... 149
CONCLUSION ET PERSPECTIVES .............................................................................. 187
MATÉRIEL ET MÉTHODES..............................