Dynamics of DNA in nucleosomes and plasmids studied by Brownian dynamics [Elektronische Ressource] / presented by Tomasz Wocjan

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• Physik

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• Publié par: ruprecht-karls-universitat_heidelberg
• Publié le: 01 janvier 2010
• Nombre de lectures: 20
• Langue: Deutsch
• Poids de l'ouvrage: 2 Mo

Extrait

Dissertation
submitted to the
Combined Faculties for the Natural Sciences and for
Mathematics
of the Ruperto-Carola University of Heidelberg, Germany
for the degree of
Doctor of Natural Sciences
presented by
Dipl.-Phys. Tomasz Wocjan
born in Warsaw, Poland
Oral examination: December 16th, 2009Dynamics of DNA
in Nucleosomes and Plasmids
studied by Brownian dynamics
Referees:
Prof. Dr. J¨org Langowski
Prof. Dr. Jeremy C. SmithZusammenfassung
Dynamik von DNS
in Nukleosomen und Plasmiden
untersucht mit Brownscher Dynamik
IndieserArbeitwurdedieDynamikvonDNSinNukleosomen(DNS-Protein-Komplexe)
und Plasmiden (DNS-Ringe), welche die grundlegenden strukturellen Einheiten fu¨r die
Organisation von DNS in prokaryotischen und eukaryotischen Zellen sind, analysiert.
Die Untersuchung von DNS Bewegung auf dieser L¨angenskala ist von Bedeutung fu¨r
das Verst¨andnis der u¨bergeordneten Struktur, welche einen entscheidenden Faktor
in der Regulierung von fundamentalen Prozessen, wie z.B. Transkription und Re-
plikation, darstellt. Modelle von DNS und Nukleosome sind mit Hilfe von Brown-
schen Dynamik Simulationen untersucht worden in Hinblick auf experimentelle Tech-
niken wie Fluoreszenzkorrelationsspektroskopie (FCS), die zeitaufgel¨oste Informatio-
nen u¨ber die Bewegung von fluorophormarkierter DNS liefert, und dynamische Kraft-
¨spektroskopie (DFS), die die konformationellen Anderungen der nukleosomalen DNS
unter Anwendung einer externen Kraftmisst. DieBewegung einzelner DNSMonomere
ist bezu¨glich verschiedener Parameter untersucht worden, wobei eine Beschleunigung
derFluorophoredynamik in permanent gekru¨mmten DNSSequenzen mit zunehmender
Superhelizit¨at aufgezeigt wurde. Daru¨berhinaus wurde die Rotationsdynamik des
Fluorophoredipolmomentes beru¨cksichtigt, welches eine m¨ogliche Erkl¨arung bietet fu¨r
ein experimentell beobachtes Rouseregime der Monomerbewegung. In Simulationen
von Streckungsexperimenten wurde das Abrollen der DNS von dem Proteinkomplex
analysiert. ImRahmenderDFSTheoriewurdendiekinetischenRatenundEnergiebar-
rieren entlang des Reaktionweges, sowie Bindungsenergien berechnet und in Bezug zu
experimentellen Daten gesetzt.Abstract
Dynamics of DNA
in Nucleosomes and Plasmids
studied by Brownian dynamics
This thesis investigates dynamics of DNA within nucleosomes (DNA-protein com-
plexes) and plasmids (DNA rings), which are the basic units of DNA organization
in prokaryotic and eukaryotic cells. The study of DNA motion at this length scale is
important for the understanding of higher-order structure, which plays a key role in
theregulationoffundamentalbiologicalprocessessuchastranscriptionandreplication.
Coarse-grained models of DNA and the nucleosome were analyzed using a Brownian
dynamics simulations in the context of experimental techniques such as Fluorescence
Correlation Spectroscopy (FCS), which provides time-resolved information on motion
of fluorophore-labeled DNA, and Dynamic Force Spectroscopy (DFS), which probes
conformational changes of nucleosomal DNA by the application of external force. Sin-
gle DNA monomer motion was analyzed under varying parameters, which showed an
acceleration of fluorophore dynamics in permanently bent DNA sequences with in-
creasing superhelicity. Furthermore, the rotational dynamics of the fluorophore dipole
moment was taken into account, which gives a possible explanation for the experimen-
tally observed appearance of a Rouse-like regime for single monomer dynamics. Using
stretching simulations, the DNA unwrapping transition from DNA/protein complex
was studied. In the framework of the DFS theory, kinetic rates and energy barriers
along the transition pathway as well as binding energies were calculated and related to
experimental data.Die vorliegende Arbeit wurde in der Zeit von Februar 2006 bis September 2009 am
DeutschenKrebsforschungszentruminHeidelberginderAbteilungBiophysikderMakro-
moleku¨le unter der wissenschaftlichen Anleitung von Herrn Prof. Dr. J¨org Langowski
angefertigt.Contents
1 Biological Overview 17
1.1 DNA . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 17
1.2 DNA Supercoiling . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 19
1.3 Nucleosome . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 21
2 Theoretical concepts 29
2.1 Polymer theory . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 29
2.1.1 Ideal chain models . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 29
2.1.2 Polymer dynamics . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 32
2.1.3 Twisting motion in the Barkley-Zimm model . . . . . . . . . . . 35
2.2 Single-molecule force spectroscopy . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 36
2.2.1 Phenomenological model of the rupture kinetics . . . . . . . . . 37
2.2.2 Model-dependent description of the rupture kinetics . . . . . . . 40
3 Model and Methods 43
3.1 DNA model . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 43
3.1.1 Mechanical properties of DNA . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 43
3.1.2 Electrostatic interaction . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 45
3.2 Histone core model . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 49
3.3 Forces and Torques . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 53
3.4 Hydrodynamic interactions . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 54
3.5 Brownian dynamics algorithm . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 55
3.6 Parametrization . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 56
3.6.1 DNA parameters . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 57
3.6.2 Histone octamer parameters . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 58
3.6.3 Simulation parameters . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 58
3.7 Initialization . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 59
3.8 Circular and superhelical DNA . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 61
3.8.1 Monte Carlo algorithm . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 62
3.8.2 pUC18 plasmid . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 62
3.9 Oligonucleosomes . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 64
3.9.1 Nucleosome-Nucleosome interaction . . . . . . . . . . . . . . . . 64
3.9.2 Excluded volume interaction . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 65
3.9.3 Internucleosomal forces and torques . . . . . . . . . . . . . . . . 67
3.9.4 Hydrodynamic interactions in oligonucleosome model . . . . . . 694 Dynamics of circular DNA 71
4.1 Circular DNA . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 71
4.1.1 Brownian dynamics time trajectories . . . . . . . . . . . . . . . 72
4.2 Comparison to analytical solution . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 80
4.2.1 Gaussian semiflexible chain model . . . . . . . . . . . . . . . . . 80
4.2.2 Barkley-Zimm model . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 82
4.3 Circular DNA with permanently bent sequences . . . . . . . . . . . . . 83
4.4 Polarization effects . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 86
4.4.1 Fluorophore’s dipole moment dynamics . . . . . . . . . . . . . . 87
4.4.2 FCS simulation . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 90
5 Nucleosome dynamics 97
5.1 DNA fluctuations at equilibrium . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 97
5.2 Nucleosome stretching simulations . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 100
5.2.1 Nucleosome conformations . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 101
5.2.2 Force-extension curves . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 104
5.3 Dynamic Force Spectroscopy . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 106
5.3.1 Rupture force distribution . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 115
5.3.2 Links to DFS experiments . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 116
5.3.3 Complete dynamic force spectrum . . . . . . . . . . . . . . . . . 120
5.3.4 Effect of DNA charge renormalization . . . . . . . . . . . . . . . 121
5.4 Oligonucleosomes . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 123
6 Concluding Remarks 129
6.1 Conclusion . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 129
6.2 Future perspectives . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 132
7 Appendix 133