Régulation de la protéine centrale de la polarité planaire cellulaire Vangl2 dans l’organe de Corti, Regulation of the core planar cell polarity protein Vangl2 in the organ of Corti

De
Publié par

Sous la direction de Mireille Montcouquiol
Thèse soutenue le 02 décembre 2010: Bordeaux 2
Outre leur polarité apico-basale, certaines cellules épithéliales développent une seconde polarité, appelée Polarité Planaire Cellulaire (PCP). L'axe de la PCP est orienté perpendiculairement à l'axe de polarité apico-basale et régit l'orientation uniforme de certaines structures, comme les poils ou cils, non seulement à l'échelle de la cellule mais également au sein du tissu. L'épithélium cochléaire est l'un des meilleurs modèles d'étude de PCP chez les mammifères. En effet, les cellules neuro-épitheliales qui le composent, soutenues par des cellules de soutien, présentent à leur apex, des touffes ciliaires dont l'orientation est parfaitement coordonnée par la voie de la polarité planaire. Les deux premiers gènes impliqués dans la PCP chez les mammifères, Vangl2 et Scrib1, ont été identifiés sur la base du phénotype de la cochlée chez les mutants. L'analyse de la localisation de Vangl2 dans l'organe de Corti a également révélé une localisation asymétrique proximo-distale et transitoire de la protéine, perpendiculaire à l'axe apico-basal classique. Cette asymétrie apparaît à la jonction entre deux types cellulaires : une cellule sensorielle ciliée et une cellule de soutien. J'ai pu montrer au cours de mes travaux de thèse que cette asymétrie était majoritairement due à une accumulation de Vangl2 du côté distal des cellules de soutien, et que dans une moindre mesure, Vangl2 pouvait ségréger du côté distal des cellules ciliées. Cette localisation subcellulaire très précise et limitée dans l'espace semble être indépendante de l'expression du gène Scrib1 dans les cellules ciliées. La délétion du gène Scrib1 dans les cellules ciliées m'a toutefois permis de mettre en évidence que ce gène avait un rôle autonome dans la régulation de la PCP, et que les cellules de soutien de l'organe de Corti pouvaient jouer un rôle prépondérant dans le contrôle de la PCP. Mes travaux ont également permis de mettre en évidence que GIPC1 avait un rôle dans la régulation de la PCP et le maintien de l'intégrité des touffes ciliaires des cellules sensorielles, et que le complexe GIPC1/Myosine VI pouvait réguler l'établissement de l'asymétrie de Vangl2 dans l'organe de Corti.
-Pcp
-Vangl2
-Cochlée
Several epithelia exhibit a second polarity perpendicular to the apico-basal axis, called planar polarity and that governs the orientation of structures such as stereocilia and hear. Our laboratory studies planar polarity, using mammalian cochlear sensory epithelium and we focus our studies on Vangl2, that we identified as the first mammalian planar polarity gene. Vangl2 encodes a four-transmembrane protein that contains a PDZ binding domain in its C-terminus tail. Vangl2 is asymmetrically located at the junction between mechanosensory hair cells and supporting cells, and this asymmetry appears important for planar cell polarity. I have shown in my thesis, using STED microscopy, that Vangl2 asymmetry is mainly due to an accumulation of Vangl2 to the distal side of supporting cells. I sought to dissect the molecular role of Vangl2 by analysing its trafficking within the cochlear epithelium. Deletion analysis shows that the last 12 amino acids, unlike its N-terminus tail are essential for Vangl2 endoplasmic reticulum sorting, its plasma membrane targeting and its function. Conditional mutant mice analysis show that Scrib1, which we have previously shown, interacts with Vangl2 through the PDZ binding domain of its C-terminal tail, is not the protein mediating this asymmetry. My work also highlight that GIPC1 had a role in the regulation of PCP and maintaining the integrity of hair bundles of sensory cells, and that the complex GIPC1/Myosin VI could regulate Vangl2 asymmetry in the organ of Corti.
-Pcp
-Vangl2
-Cochlea
Source: http://www.theses.fr/2010BOR21761/document
Publié le : mardi 1 novembre 2011
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Université Victor Segalen Bordeaux 2
Année 2010 Thèse N°1761

Thèse
pour le
DOCTORAT DE L’UNIVERSITE BORDEAUX 2

Mention : Sciences, Technologie, Santé

Option : Biologie Cellulaire et Physiopathologie

Présentée et soutenue publiquement
Le 2 Décembre 2010

par GIESE Arnaud, Pierre
Né le 14 Mars 1982 à Pau (64)

Régulation de la Protéine Centrale de la Polarité
Planaire Cellulaire Vangl2 dans l’Organe de Corti

Membres du Jury
Pr. Marc Landry Président du Jury
Dr. Nathalie Spassky Rapporteur
Dr. Aziz El Amraoui Rapporteur
Dr. André Le Bivic Examinateur
Dr. Cécile Duplàa Examinateur
Dr. Mireille Montcouquiol Directrice de Thèse
Remerciements
Remerciements

Je tiens à remercier les membres de mon jury, Pr Marc Landry, Dr André le Bivic, Dr
Nathalie Spassky, Dr Aziz El Amraoui, Dr Cécile Duplàa, pour avoir accepté de juger ce
travail de thèse.
Je tiens particulièrement à remercier Dr Aziz El Amraoui pour m’avoir accueilli dans
son laboratoire en janvier 2010 et m’avoir enseigné la dissociation des cellules de l’organe de
Corti.
Je remercie Dr Mireille Montcouquiol et Dr Nathalie Sans pour m’avoir accueilli dans
leur laboratoire et encadré lors de ce travail de thèse. J’ai apprécié les interactions
scientifiques et les nombreux congrès auxquels j’ai pu participer et présenter mes travaux.
Je remercie tous les membres et ex-membres du laboratoire : Elodie Richard,
Christelle Durand, François Loll, Muna Hilal, Maité Moreau, Nicolas Piguel, Marie-Claude
Donat, Chantal Médina, Déborah Scheffer, Cyrille Sage, Konstantin Glebov, Claire
Mazzocco, Daniela Arma, Julie Rumi et Christine Richard.
Je remercie Déborah Scheffer, Elodie Richard et Agnès Recart pour les nombreuses
activités extra-laboratoires que nous avons partagées.
Je remercie Jérome Ezan, Christelle Durand et Elodie Richard, sans oublier Mireille
Montcouquiol et Nathalie Sans pour les corrections apportées à ce manuscrit.
Je remercie ma famille pour leur soutien de tous les jours.


« I was asked by Stichting Museumnacht to make an illustration inspired by the Van Gogh Museum to be placed in front of Amsterdam
Central Station. I made a depiction of van Gogh's troubled life in contrast to the present and a brief invented history of the making of his
Sunflowers. Let's party like it's 1888! » Stefan Glérum
Photographie prise à Amsterdam à l’occasion du congrès FENS 2010.
1

Remerciements
Communications affichées


A. GIESE, S. WARMING, R. RACHEL, R. ERWIN-COHEN, EM. RICHARD, L.
TESSAROLLO, NG. COPELAN, NA. JENKINS, N. SANS, M. MONTCOUQUIOL.
Intracellular Trafficking of the Core Planar Cell Polarity Protein Vangl2 in Sensory Cells of
the Mammalian Cochlea. FENS 2010, Amsterdam (The Netherlands).
A. GIESE, S. WARMING, R. RACHEL, R. ERWIN-COHEN, EM. RICHARD, L.
TESSAROLLO, NG. COPELAN, NA. JENKINS, N. SANS, M. MONTCOU QUIOL.
Intracellular Trafficking of the Core Planar Cell Polarity Protein Vangl2 in Sensory Cells of
the Mammalian Cochlea . 2nd Joint Meeting of the french and Japanese Societies for
Developmental Biology 2010, Institut Pasteur, Paris (France).
A. GIESE, S. WARMING, R. RACHEL, R. ERWIN-COHEN, EM. RICHARD, L.
TESSAROLLO, NG. COPELAN, NA. JENKINS, N. SANS, M. MONTCOUQUIOL.
Intracellular Trafficking of the Core Planar Cell Polarity Protein Vangl2 in Sensory Cells of
the Mammalian Cochlea. ENINET Meeting 2010, Coimbra (Portugal).
A. GIESE, S. WARMING, R. RACHEL, R. ERWIN-COHEN, EM. RICHARD, L.
TESSAROLLO, NG. COPELAN, NA. JENKINS, N. SANS, M. MONTCOUQUIOL.
Intracellular Trafficking of the Core Planar Cell Polarity Protein Vangl2 in Sensory Cells of
the Mammalian Cochlea. Journée de l’Ecole Doctorale 2010, Arcachon (France).
A. GIESE, C. MAZZOCCO, EM. RICHARD, D. SCHEFFER, N. SANS, M. E.
MONTCOUQUIOL. GIPC1, a key regulator of hair bundle integrity and Vangl2 trafficking.
9e colloque des Neurosciences 2009, 26-29 May, Bordeaux (France).
A. GIESE, C. MAZZOCCO, EM. RICHARD, D. SCHEFFER, C. SAGE, N. SANS, M. E.
MONTCOUQUIOL. Identification of novel interactors for Vangl2. Journée de l’Ecole
Doctorale 2009, 18 April, Arcachon (France).
A. GIESE, C. MAZZOCCO, EM. RICHARD, D. SCHEFFER, C. SAGE, N. SANS, M. E.
MONTCOUQUIOL. Identification of novel interactors for Vangl2. Society for Neuroscience
2008, 15-19 November, Washington (USA).
2

Abréviations
Abréviations
aa acides aminés
ADN Acide désoxyribonucléique
APC Adenomatous Polyposis Coli
aPKC atypic Protein Kinase C
ARNm Acide ribonucléique messager
CCE Cellule Ciliée Externe
CCI Cellule Ciliée Interne
COS-7 African Green Monkey SV40-transfed kidney fibroblast cell
Crb Crumbs
CRD Cystein Rich Domain
C-terminale Extremité Carboxy Terminale
DC Deiter Cell
DEP Dishevelled, EGL-10, Pleckstrin
DIV Day in Vitro / Jours In Vitro
DIX Dishevelled-Axin
Dsh Dvl: Dishevelled
E16,5 ; E17,5 ; … Embryonnaire
EGF Epidermal Growth Factor
ENU N-Ethyl-N-NitrosoUrea
Fz Frizzled
GFP Green Fluorescent Protein
GSK3β Glycogen Synthase Kinase 3β
HEK293T Human Embryonic Kidney 293 cells
hsFz heat shock Frizzled
IHC Inner Hear Cell
IPC Inner Pillar Cell
JNK Jun N-terminal Kinase
kb kilo bases
LEF Lymphoid Enhancer-binding Factor
3

Abréviations
LGL Lethal Giant Larvae
MAGUK Membrane-Associated GUanylate Kinase
MDCK Madin-Darby Canine Kidney Cells
NICD Notch-1 IntraCellular Domain
NLS Nuclear localization site
N-terminale Extremité Amino Terminale
OHC Outer Hair Cell
OPC Outer Pillar Cell
P0 ; P1 ; … Post embryonnaire
pb paires de bases
PCP Planar Cell Polarity
PDZ PSD-95, DLG, ZO1
PDZ-BD PDZ - Binding Domain
ROCK RHO-associated kinase
RT-PCR Retro Transcription Polymerase Chain Reaction
SC Supporting Cell / Cellule de Soutien
sFRP: secreted Frizzled Related Protein
shRNA: short herpin RiboNucleic Acid
TCF T-cell Factor
Wnt/Wng Wingless
WT Wild Type
YFP Yellow Fluorescent Protein

4

Tables des matières
Tables des matières
REMERCIEMENTS ....................................................................................................................................................1
ABREVIATIONS..........................3
TABLES DES MATIERES .........................................................................................................................................5
LISTE DES FIGURES...............10
LISTE DES TABLES .................................................................................................................................................12
RESUME ......................................13
AVANT-PROPOS.......................................................................................................................................................14
INTRODUCTION15
LA POLARITE DROITE-GAUCHE.................................................................................................................................17
LA POLARITE APICO-BASALE....17
AUTRES TYPES DE POLARITE....18
CHAPITRE 1 : POLARITE PLANAIRE CELLULAIRE (PCP) ......................................................................21
1.1 DEFINITION ET GENERALITES.........................................................................................................................21
1.2 POLARITE PLANAIRE CELLULAIRE CHEZ LA DROSOPHILE............23
1.2.1 La PCP contrôle l’orientation des trichomes de l’aile de drosophile................................................23
1.2.2 La PCP contrôle la rotation des ommatidies de l’œil de drosophile.................25
1.2.3 Les gènes PCP sont organisés en deux cassettes de signalisation.....................26
1.2.4 La cassette de signalisation Fat/Dachsous/Four-jointed....................................................................28
1.2.5 La cassette de signalisation Frizzled/Flamingo ou gènes centraux de la PCP.30
1.2.5.1 Les gènes centraux de la PCP ......................................................................................................................... 30
1.2.5.2 Le « swirling pattern » des mutants de la cassette Frizzled/Flamingo 30
1.2.5.3 Origine des noms des gènes centraux de la PCP........................... 31
1.2.5.4 Les protéines centrales de la PCP ................................................................................................................... 32
1.2.5.5 Gain et perte de fonction des gènes centraux entraînent un phénotype PCP............... 35
1.2.5.6 Effet autonome et non autonome.................... 35
1.2.5.6.1 Effet cellule-autonome............................................................................................................................ 36
1.2.5.6.2 Effet cellule non autonome..................... 37
1.2.6 Asymétrie des protéines centrales de la PCP ou « Core PCP Protein » ...........................................38
1.2.6.1 Une asymétrie proximo-distale ....................................................................................... 38
1.2.6.2 Comment l’asymétrie est-elle établie ?.......... 40
1.2.6.3 Perte d’asymétrie chez les mutants PCP ........................................................................................................ 41
1.2.6.4 L’asymétrie proximo-distale, un gradient d’activité ?................... 42
1.2.7 Un point sur la signalisation PCP........................................................................44
5

Tables des matières
1.3 POLARITE PLANAIRE CELLULAIRE CHEZ LES MAMMIFERES..........................................................................45
1.3.1 Modèles d’étude de la polarité planaire chez les mammifères...........................................................45
1.3.1.1 Follicules pileux............................................................................... 46
1.3.1.1.1 Le follicule pileux : une asymétrie morphologique .............................................................................. 46
1.3.1.2 L’oreille ............................................................................................ 48
1.3.1.2.1 L’oreille externe...................................................................................................... 48
1.3.1.2.2 L’oreille moyenne ................................... 49
1.3.1.2.3 L’oreille interne....... 49
1.3.1.2.3.1 L’organe de Corti ........................................................................................................................... 50
1.3.1.2.3.1.1 Cellules ciliées....................... 51
1.3.1.2.3.1.2 Cellules de soutien................................................................................................................. 52
1.3.1.2.3.1.3 Cellule ciliée et cellule de soutien, une relation étroite....................... 53
1.3.1.2.3.1.3.1 La Différenciation des cellules ciliées et de soutien est interdépendante.................. 53
1.3.1.2.3.1.3.2 Jonctions d’adhérence serrées particulières................................................................. 57
1.3.1.2.3.2 Système vestibulaire....................................................................................... 57
1.3.1.3 Tissus dont la fonction dépend de la polarité planaire.................................................. 58
1.3.1.4 Mutants PCP chez les mammifères et oreille interne.................... 58
1.3.1.5 Nouveaux gènes régulateurs de la PCP chez les mammifères...................................................................... 60
1.3.2 Asymétrie des protéines centrales de la PCP ......................................................63
1.3.3 Relation polarité apico-basale et PCP.64
1.3.3.1 Complexes apico-basaux................................................................................................. 64
1.3.3.2 Mise en place des complexes apico-basaux ................................... 65
1.3.3.3 Interactions entre les protéines apico-basales et les protéines de la PCP..................................................... 66
1.3.4 Hypothèses sur l’établissement de l’asymétrie des protéines PCP....................68
1.3.5 PCP, extension convergente et défauts de fermeture du tube neural.................69
1.3.5.1 L’extension convergente ................................................................................................................................. 70
1.3.5.1.1 Généralités............... 70
1.3.5.1.2 Extension convergente et développement cochléaire ........................................................................... 70
1.3.5.1.3 Extension convergente et fermeture du tube neural.............. 71
1.3.5.2 Mutants PCP et défaut d’extension convergente ........................................................................................... 71
1.3.6 PCP et signalisation Wnt chez les mammifères...................73
1.3.7 PCP et pathologies ................................................................................................................................73
1.3.7.1 Ciliopathies....................... 73
1.3.7.2 Affections cardiaques...... 75
2 CHAPITRE 2 : A PROPOS DE VANGL2 ......................................................................................................76
2.1 DENOMINATION ..............................................76
2.2 STRUCTURE DE VANGL2................................................................................................77
2.3 FAMILLE VANGL.............78
2.4 VANGL2 CONTROLE DE NOMBREUX MECANISMES .........................................................................................80
2.5 VANGL2 CONTIENT UN DOMAINE DE LIAISON AUX DOMAINES PDZ............................82
2.5.1 Classification des PDZ-BDMs..............................................................................................................82
6

Tables des matières
2.5.2 Le PDZ-BDM de Vangl2, signal participant à son trafic intracellulaire ? .......................................84
2.6 ÉTUDE DE LA FONCTION DU PDZ-BDM DE VANGL2 ...................................................85
2.7 LE PDZ-BDM DE VANGL2 EST UN SITE D’INTERACTION PROTEIQUE IMPORTANT.....86
2.7.1 Vangl2 interagit avec Scrib1 via une liaison PDZ/PDZ-BDM...........................................................86
2.7.2 Vangl2 interagit avec des effecteurs de la PCP grâce au PDZ-BDM...............86
2.8 NECESSITE DE TROUVER DE NOUVEAUX PARTENAIRES POUR VANGL2.......................88
2.8.1 Crible double hybride dans l’organe de Corti.....................................................................................89
2.8.2 GIPC, nouvel interacteur de Vangl2 ....................................................................................................89
3 CHAPITRE 3 : A PROPOS DE GIPC1...........90
3.1 LA FAMILLE DE GENES GIPC .........................................................................................................................90
3.1.1 Une famille de gènes conservée au cours de l’évolution....................................90
3.1.2 Homologies ............................................................................................................90
3.2 GIPC1 .............................................................................................................................................................92
3.2.1 Dénomination.........................................92
3.2.2 GIPC1, une protéine d’échafaudage à multi domaine........................................93
3.2.3 GIPC1 : une protéine ubiquitaire.........................................93
3.2.4 GIPC1, une protéine à domaine PDZ..................................94
3.2.4.1 Les différentes classes de domaines PDZ ...................................................................... 94
3.2.4.2 Poche de liaison aux domaines de type PDZ-BD.......................... 95
3.3 LES PARTENAIRES DE GIPC1 .........................................................................................96
3.4 GIPC1, UNE PROTEINE CYTOSOLIQUE RECRUTEE AU NIVEAU DES MEMBRANES.........................................97
3.4.1 Stabilisation de récepteurs à la membrane plasmique........................................98
3.4.2 Endocytose ...........................................................................100
3.5 GIPC1 EST UN BON CANDIDAT POUR REGULER LA PCP .............................................................................101
3.5.1 GIPC et angiogenèse...........................................................101
3.5.2 GIPC et extension convergente...........................................102
3.5.3 GIPC et surdité ....................................................................................................102
3.5.4 GIPC et PCP........103
4 MATERIELS ET METHODES ......................................................................................................................104
4.1 EXPERIMENTATION ANIMALE.......................105
4.1.1 Animaux................................................................................................................................................105
4.1.2 Mise en accouplement et datation des embryons..............105
4.1.3 Euthanasie............105
4.1.4 Prélèvement des embryons..................................................................................................................105
4.2 ELECTROPORATIONS.....................................106
4.2.1 Electroporation in vitro de l’épithélium cochléaire ..........................................................................106
4.2.1.1 Isolement de l’organe de Corti...................................................... 106
4.2.1.2 Electroporation............................................... 108
7

Tables des matières
4.2.1.3 Culture d’explant cochléaire ......................................................................................................................... 108
4.2.2 Electroporation in utero dans l’oreille interne d’embryon de souris..............108
4.2.2.1 Anesthésie et laparotomie ventrale............................................................................................................... 109
4.2.2.2 Microinjection................................................ 109
4.2.2.3 Électroporation in vivo.................................................................................................. 110
4.3 CONSTRUCTIONS PLASMIDIQUES UTILISEES EN ELECTROPORATION..........................110
4.3.1 Vecteurs de surexpression...................................................................................................................110
4.3.2 Vecteurs de sous-expression...............111
4.4 ANTICORPS....................................................112
4.4.1 Anticorps primaires .............................................................................................................................112
4.4.2 Anticorps secondaires.........................113
4.4.3 Marquages à la phalloïdine ................................................................................................................113
4.5 MICROSCOPIE CONFOCALE STED114
4.5.1 Diffraction et pouvoir de résolution d’un microscope ......................................................................114
4.5.2 L’émission stimulée .............................................................................................115
4.5.3 Caractéristiques du microscope confocal STED...............................................115
4.5.3.1 Laser et diodes laser....................................... 115
4.5.3.2 Objectifs ......................................................................................................................... 116
4.5.3.3 Résolution du microscope confocal STED.................................. 116
4.5.3.3.1 Mode confocal....................................................................................................... 116
4.5.3.3.2 Mode STED (à 635 nm)........................................................................................................................ 116
5 RESULTATS EXPERIMENTAUX................117
5.1 UN NOUVEAU ROLE DES CELLULES DE SOUTIEN DANS L’ETABLISSEMENT DE LA PCP AU SEIN DE
L’ORGANE DE CORTI...............................................................................................................................................118
5.1.1 Objectifs................118
5.1.2 Résultats...............119
5.1.2.1 Analyse de l’asymétrie proximo-distale de Vangl2 dans l’organe de Corti .............................................. 119
5.1.2.2 La délétion de Scrib1 dans la cellule sensorielle n’affecte pas l’asymétrie de Vangl2, mais entraîne une
perturbation de la polarité planaire ................................................................................................................................ 120
Publication n°1 : High resolution imaging of Vangl2 and conditional Scrib1 mutants reveal an important
role for non sensory cells in Mammalian Planar Cell Polarity.....................................................................121
Abstract............................................................................................................ 123
Introduction..... 124
Materials and methods.................................................................................................................................................... 125
Results ............................................. 127
Vangl2 accumulates asymmetrically at distal edges of supporting cells and hair cells........................................ 127
A mutation in the first extracellular loop of Vangl2 does not affect its asymmetrical localization but affects its
stability....................................................................................................................................... 129
Scrib1 is required for PCP signaling in hair cells and for convergent extension.................................................. 130
Scrib1 is required for cellular patterning and Vangl2 asymmetry......... 131
8

Liste des Figures
The PDZ-BM of Vangl2 is required for its basolateral localization in cochlear hair cells .................................. 132
Vangl2 overexpression disrupts PCP, and the PDZ-BM is essential for PCP function....... 133
Discussion ....................................................................................................................................... 134
The distribution of Vangl2 is asymmetric in supporting cells and hair cells ........................................................ 134
Dual role of Scrib1 in the cochlear epithelium........................................ 135
Structure/function analysis of Vangl2 protein......................................................................... 136
References ....................................................................................................................................... 138
Supplemental Experimental Procedures........................................................................................................................ 143
Figure legends................................. 145
5.2 ANALYSE DU ROLE DE GIPC1 DANS LA REGULATION, DANS L’ORGANE DE CORTI, DE LA POLARITE
PLANAIRE ET DU TRAFIC INTRACELLULAIRE DE VANGL2 .....................................................................................162
5.2.1 Objectifs................................................................................162
5.2.2 Résultats...............162
5.2.2.1 Identification de GIPC1 comme nouvel interacteur .................................................................................... 162
5.2.2.2 Vangl2 et GIPC1 interagissent...................................................... 163
5.2.2.3 GIPC1 est impliqué dans la régulation de Vangl2 et forme des complexes.............. 163
5.2.2.4 Analyse du rôle fonctionnel de GIPC1 dans l’organe de Corti................................................................... 165
Publication n°2 : GIPC1 has a dual role in Vangl2 trafficking and hair bundle integrity..........................167
Abstract............................................................................................................................................................................ 168
Introduction..... 169
Results............. 170
Vangl2 and GIPC1 interact....................................................................................................................................... 170
GIPC1/synectin mutant have no phenotype............ 171
GIPC1 and Vangl2 are present in endocytic vesicles ............................................................................................. 171
GIPC1 and myosin VI from a protein complex with Vangl2................. 172
Myosin VI participate in Vangl2 trafficking ........................................................................................................... 173
Vangl2 accumulates asymmetrically at distal edges of supporting cells and hair cells........ 174
GIPC downregulation leads to hair bundle phenotypes in vitro............ 175
GIPC downregulation leads to hair bundle phenotypes in vivo ............................................................................. 176
Discussion ....................................................................................................... 178
GIPC are regulators of Vangl2 trafficking and PCP............................................................... 178
GIPC is a major regulator of hair bundle formation/maintenance......................................... 180
Experimental Procedures................................................................................................................ 182
References ....................................... 187
6 DISCUSSION ET PERSPECTIVES ..............................................................................................................202
REFERENCES..........................................................222
ANNEXES..................................................................................................................................232
9

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