Advances in proton MR spectroscopy for quantifying pain associated metabolic changes in the human brain [Elektronische Ressource] / Alexander Gussew. Gutachter: Jürgen, R. Reichenbach ; Ewald Moser. Betreuer: Andreas Keller

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• Publié par: technische_universitat_ilmenau
• Publié le: 01 janvier 2011
• Nombre de lectures: 39
• Langue: Deutsch
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Extrait

Advances in proton MR spectroscopy for quantifying
pain associated metabolic changes in the human brain
Dissertation
zur Erlangung des akademischen Grades
Doktoringenieur (Dr.-Ing.)
vorgelegt der Fakultät für Informatik und Automatisierungstechnik
der Technischen Universität Ilmenau
von Dipl.-Ing. Alexander Gussew
geboren am 13. Juni 1979 in Perm, Russische Föderation
Tag der Einreichung: 14. Februar 2011
Tag der wissenschaftlichen Aussprache: 11. Juli 2011
Gutachter:
1. Apl. Prof. Dr.-Ing. habil. Andreas Keller
2. Prof. Dr. rer. nat. med. habil. Jürgen R. Reichenbach
3. Univ. Prof. Dr. Ewald Moser
urn:nbn:de:gbv:ilm1-2011000210Zusammenfassung
Die vorliegende Arbeit beschreibt die Anwendung der Protonenmagnetresonanzspektro-
1
skopie ( H-MRS) zum nicht invasiven Nachweis von schmerzinduzierten Änderungen des
erregenden Neurotransmitters Glutamat sowie anderer Metaboliten im menschlichen Ge-
hirn. Diese Informationen könnten zu einem tieferen Verständnis der biochemischen Pro-
zesse während der zerebralen Schmerzverarbeitung beitragen. Nach einer kurzen Ein-
führung in die Problematik der Schmerzforschung sowie in die Grundlagen der MRS-
Technik wird eine im Rahmen dieser Arbeit implementierte Methode zur Berechnung
absoluter Metabolitenkonzentrationen unter Berücksichtigung der heterogenen Gewebe-
zusammensetzung im spektroskopischen Volumen beschrieben. Der Vorteil dieses Ver-
fahrens in Bezug auf die Verbesserung der Quantifizierungsgenauigkeit wird anhand von
Ergebnissen spektroskopischer Messungen in einem Phantom sowie in Gehirnen gesunder
Probanden belegt. Der zweite Teil befasst sich mit der Implementierung einer Tech-
nik zur reizgetriggerten Akquisition von MR Spektren, welche eine Abtastung verschie-
dener Stimulationszustände mit einer zeitlichen Auflösung von wenigen Sekunden zulässt
und somit die Detektion dynamischer Änderungen von Metaboliten im Gehirn ermög-
licht. Durch die Anwendung dieser Methode bei Messungen an gesunden Probanden
konnten Änderungen im Glutamatstoffwechsel infolge einer Stimulation mit kurzen aku-
ten Schmerzreizen nachgewiesen werden. Im dritten Teil der Arbeit wird schließlich eine
an gesunden Probanden und Patienten mit chronischen Schmerzen durchgeführte Studie
vorgestellt, innerhalbdererdieAuswirkungenderSchmerzchronifizierungaufdenMetabo-
lismus in schmerzverarbeitenden kortikalen Regionen untersucht wurden. Die Ergebnisse
dieser Studie belegen die Hypothese, dass chronischer Schmerz mit Veränderungen im
Neurotransmitterstoffwechsel sowie mit degenerativen Prozessen auf zellulärer Ebene ein-
1
hergeht. Zusammenfassend lässt sich sagen, dass es mit der H-MRS möglich ist, schmerz-
induzierte Änderungen der Metaboliten im menschlichen Gehirn unter Verwendung von
klinischen Standartverfahren zu quantifizieren. Dies wiederum eröffnet ein breites Feld
für weitere Untersuchungen, welche zur Erforschung der zerebralen Schmerzverarbeitung
sowie zur Verbesserung der Spezifität diagnostischer Verfahren bei chronischen Schmerzen
beitragen könnten.Abstract
In this work non-invasive in vivo detection of excitatory neurotransmitter glutamate and
other cortical metabolites and their changes in the presence of acute and chronic pain was
1
performed in the human brain with proton magnetic resonance spectroscopy ( H-MRS).
This information can be used to better understand biochemical processes of cerebral pain
processing. Following introductory material, the first part of this thesis describes the
implemented method for post-processing of MR spectroscopic data to estimate absolute
concentrations of the brain metabolites by considering the heterogeneous tissue compo-
sition in the spectroscopic voxel. Phantom and in vivo brain studies demonstrated the
advantage of this method by reduced inter-individual variation of calculated metabolic
concentrations as well as enhanced quantitation accuracy. The second part of this work
presents the implemented method for the stimulus triggered data sampling permitting
1
the acquisition of in vivo H-MR spectra with a time resolution of few seconds. It was
shown that this method enables detection of changes of the neurotransmitter glutamate
induced by short acute pain stimuli. Considering these data, it was possible to charac-
terise changes of the glutamatergig neurotransmission associated with the sensation of
the acute pain. The third part describes in vivo measurements on chronic pain patients
and healthy controls aiming to evaluate the changes of several brain metabolites in the
different cerebral pain processing regions associated with chronic pain. Patients revealed
decreased concentrations of the metabolic cell density markers and neurotransmitters in-
dicating the degenerative processes as well as neurotransmitter dysfunctions, respectively.
Results of this thesis indicate that pain induced metabolic changes in the human brain
1
are traceable with the H-MRS by using experimental environment as it is used in clin-
ical routine. This offers a broad spectrum of further applications aiming to explore the
cerebral pain processing as well as to improve the specificity of the diagnostic assessment
of the chronic pain disease.Abbreviations
Relative water content in tissue Xx
~B Main static magnetic field0
~B (t) Time variant excitation magnetic field1
BOLD Blood Oxygen Level Dependent contrast
BW Sampling bandwidth
CHESS CHEmical Shift Selective water suppression
CLBP Chronic low back pain
CRLB Cramer-Rao-Lower-Bound
CSF Cerebrospinal fluid or liquor
CSI Chemical shift imaging
Cr Creatine
C Concentration of substance Xx
EC Eddy Current
FID Free Induction Decay
fMRS Functional Magnetic Resonance Spectroscopy
FWHM Full Width at Half Maximum
f Relative volume fraction of tissue X in the MRS voxelx
GABA -aminobutyric acid
Glu Glutamate
Gln Glutamine
Glx Sum of glutamate and glutamine
GM Grey matter
G , G , G Magnitudes of linear magnetic field gradientsx y z
h Planck constant
I Signal intensity of substance Xx
J Scalar coupling constant
~L Intrinsic angular momentum
LCModel Linear Combination Model
mI Myo-Inositol
MM Macromolecule
MRI Magnetic Resonance Imaging
MRS Magnetic Spectroscopy
MP-RAGE Magnetization Prepared Rapid Gradient Echo~M Transverse macroscopic magnetisationxy
~M Longitudinal macroscopic magnetisationz
NAA N-acetyl-aspartate
NAS Number of averaged single acquisitions
NMR Nuclear Magnetic Resonance
N Number of sampled time course pointsSamp
PRESS Point RESolved Spectroscopy
R Relaxation related signal attenuation for substance Xx
SD Standard deviation
SNR Signal to noise ratio
SVD Singular Value Decomposition
SVS Single Voxel Spectroscopy
T Time constant of longitudinal relaxation1
T Timet of transverse2
TA Acquisition time
tCho total choline (phosphorylcholine + glycerophosphorylcholine)
TE Echo time
TR Repetition time
TTL Transistor Transistor Logic
u(t) Time signal
U(!) Frequency spectrum
VAS Visual-Analogue pain Scale
VoI Volume of Interest
Vox Voxel
w Channel weighting factork
WM White matter
Gyromagnetic ratio
Chemical shift
’ Signal phase
~ Nuclear magnetic moment
!~ Larmor frequency0Contents
1 Introduction 1
1.1 Historical development of anatomical imaging . . . . . . . . . . . . . . . . 1
1.2 Magnetic resonance spectroscopy (MRS) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 2
1.3 In vivo MR spectroscopic investigation of pain related metabolic changes
in the brain . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 4
1.4 Objectives of the thesis . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6
2 NMR Basics 9
2.1 Physical principles of Nuclear Magnetic Resonance (NMR) . . . . . . . . . 9
2.1.1 Nuclear spin and magnetic moment . . . . . . . . . . . . . . . . . . 9
2.1.2 Macroscopic magnetisation . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 11
2.1.3 Resonance . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 12
2.1.4 Relaxation . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 13
2.1.5 NMR signal detection . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 16
2.2 Magnetic resonance imaging (MRI) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 18
2.2.1 Slice selection . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 19
2.2.2 Frequency encoding . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 19
2.2.3 Phase encoding . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 19
2.2.4 Two dimensional spatial encoding . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 20
2.3 Magnetic resonance spectroscopy (MRS) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 22
2.3.1 Identification of chemical compounds . . . . . . . . . . . . . . . . . 23
2.3.1.1 Chemical shift and peak intensity . . . . . . . . . . . . . . 23
2.3.1.2 Spin-spin coupling and peak splitting . . . . . . . . . . . . 24
2.3.2 In vivo MRS . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 27
2.3.2.1 Localisation of target volume . . . . . . . . . . . . . . . . 27
2.3.2.2 Preparation of in vivo MRS examination . . . . . . . . . . 30
2.3.3 Absolute quantitation of MR spectra . . . . . . . . . . . . . . . .