Imagerie moléculaire d'échantillons biologiques par spectrométrie de masse ToF-SIMS, ToF-SIMS mass spectrometry imaging of biological samples

Delphine Debois

Description

Sous la direction de Olivier Laprévote
Thèse soutenue le 03 octobre 2008: Evry-Val d'Essonne
Mon travail de thèse, débuté en septembre 2005, a été consacré au développement de l’émergente technique d’imagerie par spectrométrie de masse ToF-SIMS. Une première partie de ce travail a été orientée vers des aspects fondamentaux avec l’utilisation d’une source d’ions fullerènes comme faisceau d’ions primaires, mais aussi comme faisceau de pulvérisation. Le but était d’éprouver la possibilité de réaliser une imagerie 3D sur des échantillons biologiques par spectrométrie de masse ToF-SIMS. Une seconde partie de mon travail de thèse a été consacrée à l’utilisation de la technique proprement dite. Différents domaines d’application ont été étudiés, comme l’archéologie, avec l’analyse de la composition des patines recouvrant les statues rituelles de la tribu Dogon (Mali) ou l’étude de la dégradation de cheveux de momies chinoises. Un troisième projet a consisté à analyser in situ les surfactines, une famille de cyclodepsipeptides amphiphiles, sur des profils de colonisation de surface de Bacillus subtilis. Cette analyse qualitative par imagerie ToF-SIMS a été complétée par une analyse quantitative par spectrométrie de masse MALDI-TOF. Enfin, le dernier projet mis en œuvre durant ma thèse concerne la recherche de biomarqueurs lipidiques de la stéatose hépatique non alcoolique chez l’humain. Les résultats ont mis en évidence la complémentarité de l’imagerie par spectrométrie de masse avec d’autres techniques permettant la localisation de composés ciblés, comme la coloration histologique. Les résultats de cette thèse démontrent que l’imagerie par spectrométrie de masse ToF-SIMS peut être appliquée dans des domaines aussi divers que l’archéologie, la microbiologie ou la médecine.
-Coupe tissulaire
My PhD’s work has been devoted to the development of the emergent technique ToF-SIMS imaging. The first part of my work was dedicated to fondamental aspects with the use of a fullerene ion source as a primary ion beam or sputtering ion beam. We expected to realize 3D imaging. The second part of my work consisted to applications of the mass spectrometry imaging. Several application fields were studied, as archeology as with the analysis of patina of the Dogon statuary or chinese mummy hair. A third project was dedicated to the in situ biomarker research from human liver biopsies. The goal of this study was to identify a potential lipid biomarker of the non-alcoholic fatty liver disease. The last part of this manuscript is devoted to the in situ qualitative and quantitative analysis of surfactins (a family of heptacyclodepsipeptides) on a Bacillus subtilis swarming community. We combined ToF-SIMS imaging for qualitative analysis and localization of surfactins within the swarming pattern and MALDI-TOF mass spectrometry for the quantification of these species. The results ot this PhD’s work show that ToF-SIMS imaging could be applied to various fields of research as archeology, microbiology and medicine.
-Tissue slice
Source: http://www.theses.fr/2008EVRY0014/document

Informations

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• Nombre de lectures: 95
• Langue: English
• Poids de l'ouvrage: 18 Mo

Extrait

UNIVERSITÉ ÉVRY – VAL D’ESSONNE

ECOLE DOCTORALE
DES GÉNOMES AUX ORGANISMES

THÈSE
Présentée en vue de l’obtention du grade de
Docteur en Sciences de l’Université Evry – Val d’Essonne
par
Delphine DEBOIS


Imagerie moléculaire d’échantillons biologiques
par spectrométrie de masse ToF-SIMS



Soutenue le 03 octobre 2008 devant la Commission d’Examen :
Mme Jeanine Tortajada Présidente
Mr Michael Karas Rapporteur
Mr Jean-Marie Schmitter
Mr Gérard Bolbach Examinateur
Mr Alain Brunelle Examinateur
Mr Olivier Laprévote Directeur de Thèse












À Noël Quinton…






Merci à…

Monsieur le Professeur Olivier Laprévote, pour ton accueil au laboratoire, pour avoir placé en
moi une confiance dont j’espère être digne, à présent et dans l’avenir.
Monsieur le Docteur Alain Brunelle, pour le temps que tu as passé à me transmettre tout ce
que je sais en imagerie, pour les expériences (pas que scientifiques) que nous avons partagées,
pour ton humour du vendredi. Merci surtout pour ta disponibilité.
Madame la Professeur Jeanine Tortajada, pour avoir accepté de présider ce jury de thèse. La
boucle est bouclée : vous étiez déjà là lorsque j’ai présenté mon projet de thèse pour obtenir
une bourse et vous étiez encore là le jour de ma soutenance. En témoignage de ma grande
reconnaissance.
Monsieur le Professeur Michael Karas, pour l’honneur que vous me faites d’avoir accepté de
rapporter ces travaux, vous obligeant à lire 300 pages manuscrites en Français.
Monsieur le Professeur Jean-Marie Schmitter, pour votre regard sur ces travaux, en
témoignage de mon profond respect.
Monsieur le Docteur Gérard Bolbach, pour le plaisir que vous me faites d’avoir accepté
d’examiner mon travail. Avec tous mes remerciements.

Nos collaborateurs,

Madame le Docteur Pascale Richardin, Monsieur le Docteur Vincent Mazel et Monsieur le
Docteur Philippe Walter, pour notre travail commun sur les patines de statues Dogon. Chaque
journée passée ensemble devant le ToF-SIMS ressemblait à une récréation.
Madame le Docteur Simone Séror, Monsieur le Docteur Barry Holland et Kassem Hamzé,
pour notre collaboration fructueuse sur les surfactines et le swarming. Notre travail commun
m’a beaucoup appris, sur le plan scientifique comme humain.

Monsieur le Docteur Jamal Ouazzani, Philippe Lopez et Emilie Adelin, pour votre expertise et
votre efficacité sans lesquelles l’analyse quantitative des surfactines n’aurait pas connu ce
succès !
Madame la Professeur Marie-Pierre Bralet et Monsieur le Docteur François Le Naour, pour
notre collaboration sur l’étude lipidomique de pathologies hépatiques. Ce travail m’a ouvert
l’esprit vers d’autres horizons.

Toutes les personnes qui ont participé de près ou de loin, à ce travail de thèse :

David Touboul, pour m’avoir formée au ToF-SIMS à mon arrivée en thèse, pour ton amitié et
ton calme qui tempère souvent mon impulsivité,
Nora Tahallah, pour nos discussions sur les résultats en ToF-SIMS, pour être devenue une
cocotte (en or) et avoir été là quand j’en avais besoin,
Nadège Lemahieu, pour ta personnalité unique, pour m’avoir aidée dans des moments où la
solution la plus simple n’était sans doute pas la meilleure et pour ton humour incomparable,
Jean-Pierre Le Caër, pour ton humour et ton expérience dont tu nous fais bénéficier,
Vincent Guérineau, pour ces quatre années de boutades, de discussions pseudo sérieuses sur
l’avenir du labo, et puis, aussi, pour notre travail commun sur l’analyse quantitative des
surfactines.
Farida Messouaf, pour ton amitié et notre amour partagé des Bueno !. Je te souhaite bon
courage pour la fin de ta thèse,
Alexandre Seyer, pour la complicité qui a fini par s’installer entre les disciples d’Alain, je te
souhaite bonne chance et bon courage pour la suite,
Sylvain Ravier, pour cette année passée au labo ensemble, tes remarques de Marseillais
déraciné et ton amour pour les programmes télévisés de M6. Avec toute mon affection,
Aïcha Bagag, pour avoir partagé ces trois années de galère, joie, déprime, stress… Nos
caractères différents ont finalement su cohabiter dans notre bureau exigu ! Je te souhaite
bonne chance pour la suite de ta carrière, et le meilleur pour ta vie personnelle,

Isabelle, Julie, Sylvie, pour votre bonne humeur et votre présence à mes côtés durant ces
quatre années au laboratoire,

Enfin, de façon plus intime j’aimerais remercier :

Audrey et Nicolas, pour avoir servi de cobayes gastronomiques, pour leur amitié et leur
soutien,
Arnaud et Aurélie, qui ont été présents à chaque instant de cette thèse, merci de votre amitié,
Ma belle-mère Danièle, mes belles-sœurs Gwenola, Gaëlle et Morgane, elles aussi ont
participé à ce succès. Merci à vous toutes,
Mes parents, pour m’avoir laissée libre de mes choix, même s’ils ne les ont pas toujours
compris, pour le profond plaisir que j’ai eu à les voir présents à ma soutenance,
Ma sœur Sophie et son compagnon Patrique, mon frère Fabrice et sa compagne Melinda, pour
avoir suivi l’avancement de ces travaux bien étranges et trop complexes, pour tout ce temps
passé ensemble, qui va me manquer à présent que je quitte la France,

Et bien sûr,

Merci à Loïc, sans qui je n’en serais pas là. Merci pour ton soutien, tes encouragements, ta
patience à mon égard, ta tendresse et tes attentions quotidiennes. Ta présence à mes côtés rend
la vie fabuleuse, merci pour tout cet amour.


 
Liste des abréviations

MS : Mass Spectrometry TOF/TOF: Time-of-flight/Time-of-flight
ToF-SIMS : Time-of-Flight Secondary Ion CID: Collision Induced Dissociation
Mass Spectrometry
SORI-CAD: Sustained Off Resonance
MALDI-TOF: Matrix-Assisted Laser Irradiation-Collision Activated
Desorption Ionization – Time-of-Flight Dissociation
ESI: ElectroSpray Ionization IRMPD: InfraRed MultiPhoton
Dissociation
MS/MS: Tandem Mass Spectrometry
ECD: Electron Capture Dissociation
FAB: Fast Atom Bombardment
DHB: 2,5-Dihydroxybenzoic acid
DESI: Desorption ElectroSpray Ionization
HCCA: 4- α-cyanohydroxycinnamic acid
ESSI: ElectroSonic Spray Ionization
THAP: 2,4,6-trihydroxyacétophénone
ICR: Ion Cyclotronic Resonance
SA: Sinapinic Acid
LMIS/LMIG: Liquid Metal Ion Source /
Liquid Metal Ion Gun 9AA: 9-aminoacridine
PSD: Post Source Decay SRIM: Stopping Reaction Ion Monitoring
PDMS: Plasma Desorption Mass XANES: X-Ray Near Edge Spectroscopy
Spectrometry
EXAFS: Extended X-Ray
PDMS: PolyDiMéthylSiloxane
SR-µ-FT-IR: Synchrotron Radiation-
LC: Liquid Chromatography Fourier Transform InfraRed
Micrsospectroscopy
UV: Ultra-Violet

ROI: Regions of Interest

LA-ICP/MS: Laser Ablation-Inductively
Coupled Plasma/Mass spectrometry
 Sommaire
Préambule .......................................................................................................................... 1
Introduction générale ................................................................................................ 7
I. Méthodes d’ionisation .................................................................................... 10
1. SIMS : Secondary Ion Mass Spectrometry .............................................. 10
1.1. Principe ...................................................................................................... 10
1.2. Définitions ................................................................................................. 11
1.2.1. Rendement d’émission ionique secondaire ................................... 12
1.2.2. Fluence ou Densité de dose d’ions primaires ................................ 12
1.2.3. Section efficace d’endommagement .............................................. 13
1.2.4. Efficacité ........................................................................................ 14
1.3. Types de projectiles ................................................................................... 15
1.3.1. Les projectiles monoatomiques ..................................................... 15
1.3.1. Les projectiles polyatomiques ....................................................... 16
1.3.1.1. Agrégats à constituants « légers » ................................... 17
1.3.1.2. ants « lourds » 17
1.3.